Anticorps secondaires

Tissu de granulation exubérant (chair surélevée) chez le cheval, coloré à l'aide d'un anticorps anti-von Wille.
Les anticorps secondaires sont des anticorps polyclonaux ou monoclonaux qui se lient à des anticorps primaires ou à des fragments d'anticorps, tels que les régions Fc ou Fab. Ils sont généralement marqués avec des sondes qui les rendent utiles pour des applications de détection, de purification ou de tri.
Nous proposons des anticorps secondaires provenant de diverses espèces hôtes. Nos anticorps secondaires polyclonaux sont produits à partir du sérum d'animaux hôtes tels que des souris, des lapins, des chèvres et des moutons. En revanche, nos anticorps secondaires monoclonaux sont produits à partir de clones d'hybridomes de souris.
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Utilisez notre outil de recherche Antibody Explorer pour consulter et comparer les anticorps par clonalité, application, espèce, réactivité, conjugué, espèce hôte et forme.
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Micrographies fluorescentes de cellules pulmonaires de triton en mitose. Microtubules marqués à l'aide d'un anticorps monoclonal anti-^.

Coupe congelée du nerf optique de rat colorée avec un anticorps de souris anti-neurofilament H et un anticorps de chèvre anti-souris marqué au CF568 (processus neuronaux, rouge), ainsi qu'un anticorps de lapin anti-GFAP et un anticorps de chèvre anti-lapin marqué au CF488A, fortement cross-adsorbé (cellules gliales, vert). Les noyaux sont colorés avec du RedDot2 (cyan).
Anticorps conjugués et sondes
Nous proposons une large gamme d'anticorps conjugués. Un anticorps conjugué est un anticorps monoclonal ou polyclonal lié à un marqueur et utilisé pour la détection dans diverses techniques d'analyse. L'utilité spécifique d'un anticorps secondaire dépend de la ou des sondes auxquelles il est conjugué. Les sondes sont des molécules qui permettent la mise en œuvre de diverses technologies de détection. Les systèmes de détection les plus courants pour les anticorps secondaires conjugués sont colorimétriques ou fluorescents.
Les tests colorimétriques reposent généralement sur l'utilisation de la phosphatase alcaline (ALP) ou de la peroxydase de raifort (HRP) ou de leurs dérivés. Le système de liaison biotine-avidine (streptavidine) est souvent utilisé pour amplifier le signal colorimétrique de l'ALP ou de la HRP. Les tests fluorescents les plus courants utilisent l'isothiocyanate de fluorescéine (FITC), la rhodamine ou son dérivé, l'isothiocyanate de tétraméthylrhodamine (TRITC), la cyanine (Cy3) ou la phycoérythrine (R-PE).
Nous proposons des anticorps conjugués à divers marqueurs colorimétriques et fluorescents destinés à des applications de détection, de purification, de tri et de microscopie. Les anticorps conjugués sont produits chez divers animaux hôtes, ce qui les rend compatibles avec une large gamme de réactifs immunochimiques. Pour les utilisateurs dont les recherches nécessitent de marquer leurs propres réactifs, nous proposons des kits de marquage d'anticorps permettant la conjugaison de divers marqueurs (biotine, FITC, marqueurs CF™) à des anticorps monoclonaux et polyclonaux.
Protéines A, G et L
La protéine A est dérivée du Staphylococcus aureus. La protéine G est dérivée d'une espèce de Streptococcus. Toutes deux possèdent des sites de liaison pour la partie Fc de l'IgG des mammifères. L'affinité de ces protéines pour l'IgG varie selon l'espèce animale. La protéine G présente une affinité plus élevée pour l'IgG de rat, de chèvre, de mouton et de bovin, ainsi que pour l'IgG1 de souris et l'IgG3 humaine. La protéine A présente une affinité plus élevée pour les IgG de chat et de cobaye (tableau 1). Outre les sites de liaison à la partie Fc des IgG, la protéine G native contient des sites de liaison à l'albumine, à la région Fab des Ig et à la membrane, ce qui peut entraîner une coloration non spécifique. Ces problèmes ont été résolus par la création de formes recombinantes de la protéine. La protéine G recombinante a été modifiée pour éliminer la région de liaison à l'albumine, et la protéine G′ recombinante est une protéine tronquée qui ne possède pas les sites de liaison à l'albumine, au Fab et à la membrane tout en conservant le site de liaison au Fc, ce qui la rend plus spécifique pour les IgG que la forme native.
| Espèce | Immunoglobulines | Liaison - Protéine A1-4 | Liaison - Protéine G5-8 | Liaison - Protéine L9-10 |
|---|---|---|---|---|
| Humain | IgG (normal) | ++++ | ++++ | ++++ |
| IgG1 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgG2 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| IgG3 | — | ++++ | ++++ | |
| IgG4 | ++++ | ++++ | ++++ | |
| lgM | — | — | ++++ | |
| lgA | — | — | ++++ | |
| lgE | — | — | ++++ | |
| lgD | — | — | ++++ | |
| Fab | ++ | ++ | ++++ | |
| chaînes légères k | — | — | ++++ | |
| Chaînes légères L | — | — | — | |
| ScFv | ++ | — | ++++ | |
| Souris | lgG1 | + | ++++ | ++++ |
| lgG2a | ++++ | ++++ | ++++ | |
| lgG2b | +++ | +++ | ++++ | |
| lgG3 | ++ | +++ | ++++ | |
| Rat | lgG1 | — | + | ++++ |
| lgG2a | — | ++++ | ++++ | |
| lgG2b | — | ++ | ++++ | |
| lgG2c | + | ++ | ++++ | |
| Bovin | lgG | ++ | ++++ | — |
| Chat | lgG | ++++ | — | N/A |
| Poulet | lgG | — | + | ++ |
| Chien | lgG | ++++ | ++++ | + |
| Chèvre | lgG | +/- | ++ | — |
| Cochon d'Inde | lgG | ++++ | ++ | ++ |
| Hamster | lgG | + | ++ | ++++ |
| Cheval | lgG | ++ | ++++ | +/- |
| Cochon | lgG | +++ | +++ | ++++ |
| Lapin | lgG | ++++ | +++ | + |
| Mouton | lgG | +/- | ++ | — |
| Il convient de noter que la protéine L est limitée à certaines sous-classes spécifiques du domaine VL. Ainsi, l'affinité indiquée dans le tableau n'est pas générale pour la sous-classe lgG, mais ne concerne que les anticorps portant la chaîne légère kappa appropriée. | ||||
La protéine L, issue de Peptostreptococcus magnus, présente une affinité pour les chaînes légères kappa (tableau 2) de diverses espèces. Elle permet de détecter les IgG, IgA et IgM monoclonales ou polyclonales, ainsi que les fragments Fab, F(ab′)2 et les fragments Fv à chaîne unique recombinants (scFv) contenant des chaînes légères kappa. Elle se lie également aux IgG de poulet. Remarque : les espèces telles que les bovins, les chèvres, les moutons et les chevaux, dont les Ig contiennent presque exclusivement des chaînes lambda, ne se lieront pas bien, voire pas du tout, à la protéine L.
| Espèce | Liaison à la protéine L |
|---|---|
| Kappa I humain | ++++ |
| Kappa II humain | — |
| Kappa III humain | ++++ |
| Kappa IV humain | ++++ |
| Kappa I-IV humain | — |
| Ce tableau ne se veut pas exhaustif, mais couvre uniquement les sous-groupes kappa connus pour lesquels la liaison à la protéine L a été testée. Il convient de noter que la protéine L est limitée à des sous-classes spécifiques du domaine VL. Ainsi, l'affinité indiquée dans le tableau n'est pas générale pour la sous-classe IgG, mais ne concerne que les anticorps portant la chaîne légère kappa appropriée. | |
Réactifs de détection
Les protéines A et G sont utilisées comme réactifs généraux, non spécifiques à une espèce, pour la liaison des anticorps primaires ou des IgG de surface dans les tissus mammifères. La protéine G est recommandée pour la plupart des espèces, y compris la souris et le rat. La protéine A est recommandée pour le chat et le cobaye. Aucune des deux n'est recommandée pour la détection des IgA ou des IgM, pour la détection des fragments Fab, ni pour la détection des IgG aviaires. Lorsqu'elles sont liées à une résine telle que l'agarose, la protéine A et la protéine G peuvent être utilisées pour purifier par affinité les immunoglobulines à partir du sérum ou du liquide d'ascite.
La protéine L est utilisée comme réactif général pour la liaison d'anticorps primaires de mammifères ou d'oiseaux ou d'Ig de surface de toutes les classes. Elle est particulièrement utile pour la détection de fragments Fab, F(ab′)2 et de fragments scFv recombinants, pour la détection d'Ig liées à des récepteurs Fc, ou pour la détection d'anticorps monoclonaux en présence d'Ig bovines. Son utilisation est limitée à la détection d'Ig portant des chaînes légères kappa.
Résines
La protéine A et la protéine G possèdent des sites de liaison pour la partie Fc des IgG de mammifères. La capacité de ces protéines à se lier aux IgG varie selon les espèces. En général, les IgG ont une affinité plus élevée pour la protéine G que pour la protéine A, et la protéine G peut se lier aux IgG provenant d'une plus grande variété d'espèces. L'affinité des différentes sous-classes d'IgG, en particulier celles de souris et d'origine humaine, pour la protéine A varie davantage que pour la protéine G. La protéine A peut donc être utilisée pour préparer des IgG isotypiquement pures à partir de certaines espèces. La protéine L convient pour isoler des anticorps monoclonaux de souris à partir de surnageants de culture cellulaire sans contamination par des IgG bovines.

Cellules HeLa colorées avec un anticorps anti-tubuline de souris et un anticorps secondaire anti-souris de chèvre marqué au CF488A (microtubules, vert). Les filaments d'actine sont colorés avec de la phalloïdine marquée au CF640R (violet). Les noyaux sont colorés en contre-coloration avec du DAPI (bleu).
Anticorps marqués aux colorants CF™
Les colorants CF™ constituent une série de colorants fluorescents hautement hydrosolubles couvrant le spectre visible et proche infrarouge (proche IR) destinés au marquage des anticorps. Développés par des scientifiques à l'aide de techniques chimiques innovantes, la luminosité, la photostabilité et le choix des couleurs des colorants CF™ rivalisent avec la qualité d'autres colorants commerciaux grâce à une conception rationnelle.
Nous proposons des anticorps secondaires marqués par des colorants CF™ hautement validés, disponibles dans une variété d'options spécifiques à chaque espèce.
Ressources connexes
- Article: How to Choose a Secondary Antibody
Review the key factors that should figure in your decision to choose a secondary antibody. Learn about species, subclass, isotype, label, and more.
- Article: Tips for Immunofluorescence Protocols
Immunofluorescence uses antibody-conjugated fluorescent molecules for protein localization, modification confirmation, and protein complex visualization.
- Article: Using Conjugated and Secondary Antibodies
Using conjugated antibodies and secondary antibodies in the lab.
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