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Ensayos de migración e invasión celular

Resumen de la sección

La metástasis es el resultado acumulativo de múltiples cambios en células tumorales y su microentorno que permite la migración celular y la invasión del tejido sano del huésped. A medida que las células neoplásicas proliferantes intentan escapar del tumor primario, debe producirse la adhesión celular local y la invasión del tejido circundante1. Antes de penetrar en el endotelio de los vasos sanguíneos y acceder al torrente sanguíneo, las células cancerosas deben invadir los tejidos locales degradando los componentes proteicos de la MEC y, en última instancia, atravesar la membrana basal2. Una vez en circulación, estas células pueden formar colonias metastásicas en localizaciones secundarias.

Cáncer de pulmón.

La metástasis tumoral es un proceso de varios pasos que implica la adhesión, migración e invasión de las células cancerosas a los tejidos vecinos y a la vasculatura.

Figura 1.La metástasis tumoral es un proceso de varios pasos que implica la adhesión, migración e invasión de las células cancerosas en los tejidos vecinos y la vasculatura.

El ensayo de la cámara de Boyden

La técnica de migración celular más ampliamente aceptada es el ensayo de la cámara de Boyden3. El sistema clásico de ensayo de migración transwell utiliza una cámara de plástico hueca, sellada en un extremo con una membrana porosa. Esta cámara está suspendida sobre un pocillo más grande que puede contener medio y/o quimioatrayentes. Las células se colocan dentro de la cámara y se les permite migrar a través de los poros, hacia el otro lado de la membrana. A continuación, las células migratorias se tiñen y se cuentan.

Protocolo de ensayo en cámara de Boyden

Figura 2.Protocolo de ensayo en cámara de Boyden. Se permite que las células migren a través de una monocapa celular o una mezcla de proteínas ECM que se han sembrado en un inserto de cultivo celular de membrana semipermeable con quimioatrayentes añadidos debajo de la membrana. A continuación, las células migradas pueden cuantificarse tiñéndolas con colorantes de ADN como Calcein-AM o CyQUANT GR Dyes.

Kits de migración e invasión celular

Los ensayos QCM™ de Millipore de Millipore proporcionan un sistema rápido y eficaz para la determinación cuantitativa de varios factores de la migración, adhesión e invasión celular, incluyendo el cribado de agentes farmacológicos, la evaluación de integrinas, quimioatrayentes u otros receptores de adhesión responsables de la migración celular. Los kits han proporcionado a los investigadores resultados consistentes durante más de una década y han sido publicados en más de 4000 Publicaciones.

Ensayos de migración celular:

Permite una cuantificación cómoda y sensible de la migración celular in vitro hacia un gradiente de concentración química (quimiotaxis) o un gradiente de proteína ECM (haptotaxis).

Ensayos de invasión celular:

Permite una cuantificación cómoda y sensible de la invasión celular in vitro a través de una proteína ECM de membrana basal o una capa de células como las células endoteliales.

Cómo seleccionar el tamaño de poro adecuado para sus células:

  • 3 μm de tamaño de poro es adecuado para la migración de leucocitos o linfocitos.
  • 5 µm de tamaño de poro es adecuado para un subconjunto de células de fibroblastos o células cancerosas como las células NIH-3T3 y MDA-MAB 231. También es adecuado para monocitos y macrófagos.
  • El tamaño de poro de 8 μm es adecuado para la mayoría de tipos celulares. Este tamaño de poro admite una migración óptima para la mayoría de las células epiteliales y fibroblastos. Nota: el tamaño de poro de 8 μm no es adecuado para experimentos de migración de linfocitos.

Ensayos de migración celular

DescripciónTamaño del poroFormato de la placaRecubrimiento ECMDetecciónNúm. de pruebasNº de producto
Ensayos de migración celular quimiotaxis8 µm24 pocillos
NingunoColorimétrico24ECM508
  24 pocillos Fluorométrico24ECM509
  96 pocillos Fluorométrico96ECM510
 5 µm24 pocillos Colorimétrico24ECM506
  24 pocillos Fluorométrico24ECM507
  96 pocillos Fluorométricos96ECM512
3µm24 pocillos Colorimétrico24ECM504
  24 pocillos Fluorométrico24ECM505
  96 pocillos Fluorométricos96ECM515
Ensayos de migración celular por haptotaxis8 µm24 pocillosFibronectinaColorimétrica24ECM580
  24 pocillosColágeno IFluorométrico24ECM582
 5 µm24 pocillosLamininaColorimétrica24ECM220
  24 pocillos Fluorométricos24ECM221

 Ensayos de invasión celular

DescripciónTamaño del poroFormato de la placaRecubrimiento ECMDetecciónNúm. de pruebasNº de producto
Ensayos de invasión celular8 µm24 pocillosECMatrix™Colorimétrico12ECM550
  24 pocillos Colorimétrico24ColorimétricoECM554
  96 pocillos ColorimétricoColorimétrico96ECM555
  24 pocillosColágeno IColorimétrico24ECM551
  24 pocillos Fluorométrico24ECM552
  96 pocillos96 pocillos Fluorométrico96ECM556
Ensayos de migración de células endoteliales3 µm24 pocillosFibronectinaColorimétrica24ECM200
 24 pocillos Fluorométrico24ECM201
Invasión de células endotelialesEnsayos de invasión de células endoteliales 24 pocillosECMatrix™.Colorimétrico24ECM210
  24 pocillosFluorométrico24ECM211
Migración transendotelial de leucocitos3 µm24 pocillosFibronectinaColorimétrica24ECM557
Migración transendotelial de células tumorales8 µm24 pocillos Colorimétrico24ECM558
QCM™ Invadopodia Gelatin Degradation Assay (Green)NANAFITC-Gelatin*Fluorométrico32ECM670
  Cy3-Gelatina*Fluorométrico32ECM671

Dispositivo de migración microfluídica.

Millicell® µ-Migration Assay Kit

Supera las limitaciones de los ensayos de migración multipocillo tradicionales. El innovador diseño del µ-Migration Slide promueve un gradiente de concentración estable generado por difusión que es consistentemente lineal y dura más de 48 horas. Fabricado a partir de un plástico con altas cualidades ópticas similares a las del vidrio, el µ-Migration Slide está especialmente diseñado para ensayos de microscopía de vídeo. A intervalos de tiempo específicos, se pueden adquirir imágenes de la zona de observación, lo que permite la monitorización en tiempo real y las mediciones cuantitativas de la migración celular.

Migration Slide.

Migración celular en vivo de células HT1080

Figura 3.Migración celular en vivo de células HT1080. Efecto de las concentraciones de suero (0% o 10%) en la propensión a la migración de células HT1080 sobre una superficie recubierta de colágeno. Los resultados muestran que la mayoría de las células han dirigido la migración hacia el gradiente de FCS al 10% (negro).

<En Vitro.i>In Vitro Ensayo de rascado

El ensayo de rascado es un método popular para el estudio de la migración celular4. Sin embargo, la ampliación de esta técnica ha demostrado ser un reto, lo que dificulta el análisis bioquímico de los eventos moleculares que median en la reparación de heridas. El ensayo de rascado Cell Comb™ responde a la necesidad de disponer de una herramienta sencilla capaz de crear múltiples heridas de rascado con un mayor rendimiento.

Lea nuestra nota de aplicación en Nature

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Ensayo de raspado in vitro
Nº de productoDescripción del producto
17-10191Cell Comb™ Scratch Assay
Utilizando el ensayo de rayado CellComb, se rayaron/perforaron monocapas de células NIH3T3 en un patrón unidireccional (izquierda) o bidireccional (derecha).

Figura 4.Utilizando el ensayo de rayado CellComb, se rayaron/perforaron monocapas de células NIH3T3 en un patrón unidireccional (izquierda) o bidireccional (derecha). Con el tiempo, las células migratorias rellenarán las secciones rayadas y se cuantificarán mediante un simple recuento celular. También es posible obtener imágenes de células vivas en células migratorias utilizando el ensayo de migración por rascado.

Proteínas ECM

Las proteínas de la matriz extracelular (ECM) Las proteínas de la matriz extracelular (MEC) se producen intracelularmente y posteriormente se secretan en el medio celular circundante, regulando activamente una amplia gama de funciones celulares, como la adhesión celular, la diferenciación, la proliferación, la migración, la invasión y la supervivencia. Una de las principales utilidades de las MEC en cultivos in vitro es promover la adhesión celular manteniendo la viabilidad celular y maximizando la proliferación celular para aplicaciones celulares posteriores.

    Referencias

    1.
    Friedl P, Alexander S. 2011. Cancer Invasion and the Microenvironment: Plasticity and Reciprocity. Cell. 147(5):992-1009. https://doi.org/10.1016/j.cell.2011.11.016
    2.
    Lu P, Takai K, Weaver VM, Werb Z. 2011. Extracellular Matrix Degradation and Remodeling in Development and Disease. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 3(12):a005058-a005058. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a005058
    3.
    Chen H. Boyden Chamber Assay.015-022. https://doi.org/10.1385/1-59259-860-9:015
    4.
    Liang C, Park AY, Guan J. 2007. In vitro scratch assay: a convenient and inexpensive method for analysis of cell migration in vitro. Nat Protoc. 2(2):329-333. https://doi.org/10.1038/nprot.2007.30
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