清洁实验室玻璃器皿


 引言

良好的实验室技术要求清洁玻璃器皿,因为如果使用脏玻璃器皿,最精心执行的工作都可能会产生错误的结果。在所有情况下,玻璃器皿都必须是物理和化学清洁的,并且在许多情况下,它必须是细菌学清洁或无菌的。所有玻璃器皿必须绝对无油脂。最安全的清洁标准是蒸馏水能均匀润湿表面。这在用于测量液体体积的玻璃器皿中尤为重要。润滑脂和其他污染物质会防碍玻璃均匀润湿。继而这会改变粘附在玻璃容器壁上的残留物的体积,从而影响排出的液体体积。此外,在移液管和滴定管中,凹液面会扭曲并且不能进行正确的调整。少量杂质的存在也可能改变凹液面。

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 清洁实验室玻璃器皿

使用后尽快清洗实验室器皿。如果不立即清洁实验室器具,可能无法清除残留物。

如果无法立即彻底清洁,请将玻璃器皿浸泡在水中。

大多数新玻璃器皿在反应中都呈弱碱性。对于精密化学测试,新的玻璃器皿应在酸性水(1%盐酸或硝酸溶液)中浸泡数小时,然后再进行常规洗涤。

建议使用带木质或塑料手柄的刷子,因为它们不会划伤或磨损玻璃器皿的表面。

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 玻璃器皿去垢剂

洗涤时,可以使用肥皂、去垢剂或去垢粉(有或没有研磨剂)。玻璃器皿去垢剂包括Alconox®、Dural®、M&H®、Lux®、Tide®和Fab®。应该用热水。对于特别脏的玻璃器皿,具有轻微研磨作用的去垢粉的清洁作用更令人满意。研磨剂不应擦伤玻璃。在洗涤过程中,玻璃器皿的所有部分都应该用刷子彻底擦洗。这意味着手头必须有一整套刷子,包括适合大、小试管、滴定管、漏斗、刻度管以及各种尺寸的烧瓶和瓶子的各种刷子。当处理大量试管或瓶子时,建议使用电动旋转刷。请勿使用磨损严重的清洁刷,以免刷子芯柱撞击玻璃, 造成严重划痕。被划伤的玻璃器皿在实验过程中更容易破裂。玻璃器皿均匀表面上如有任何痕迹,都是潜在的破裂点,尤其是在加热时。在彻底清除去垢剂(或肥皂)之前,不要让酸与玻璃器皿接触。如果发生这种情况,可能会形成一层油脂。

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 安全使用铬酸安全使用铬酸

如果玻璃器皿变得过度混浊、脏污,或者含有凝结的有机物质,则必须用铬酸去垢液进行清洁。在使用重铬酸盐时应极其小心,因为它具有极强的腐蚀性和致癌性。

当使用铬酸溶液时,可以用其冲洗器皿,或者用其充满器皿,并静置。静置的时间长短取决于玻璃器皿的脏污程度。相对干净的玻璃器皿可能只需要几分钟,如果存在碎屑,例如血块,则可能需要使玻璃器皿静置整夜。由于铬酸溶液具有强烈的腐蚀作用,好的做法是,将原液瓶以及待处理的玻璃器皿放在平板玻璃盘上,盘子也可以铅的或镀铅的,或是塑料聚合物的,只要确定适合您正在使用的铬酸浓度。在弃置铬酸溶液时必须特别小心。

特殊类型的沉淀物可能需要用硝酸、王水或发烟硫酸除去。这些是腐蚀性很强的物质,只有在必要时才使用。

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 去除油脂

去除油脂的最好办法是在弱碳酸钠溶液中煮。可以使用丙酮或任何其他脂肪溶剂。不得使用强碱。将旋塞或桶浸泡在温的十氢化萘中2小时,最容易除去硅油。

沥干,然后用丙酮或发烟硫酸冲洗30分钟。务必将去垢剂冲洗干净。

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 冲洗

使用前,必须将玻璃器皿上的所有肥皂、去垢剂和其他去垢液清洗干净。这对去垢剂尤其重要,因为残留微量去垢剂都会干扰血清和培养反应。

清洁后,用流动的自来水冲洗玻璃器皿。当用自来水冲洗试管、刻度管、烧瓶和类似容器时,先让水流进容器,并溢出一会儿,然后不灌满,使劲摇动后倒空,重复至少六次。在冲洗移液管和滴定管时,最好在水龙头上连接一根橡胶管,然后把管子的另一端连接到移液管或滴定管的排液端,让水流过它们。如果自来水非常硬,最好先经过离子机净化。

在装有蒸馏水的大水槽里冲洗玻璃器皿。用蒸馏水冲洗。为了节约蒸馏水,使用5加仑的瓶子作为储存容器。将其存放在清洁区域附近的架子上。在上面安装一个虹吸管,用它向蓄水箱里补充用过的蒸馏水。对于敏感的微生物检测,仔细清洁后,必须在蒸馏水中冲洗12次。

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 消毒受污染的玻璃器皿

被血液污染的玻璃器皿,如血清管、培养基、培养皿等,必须在清洁前进行灭菌。最好在实验室中将其放入盛有水的大桶或锅中处理,加入1-2%的皂液或去垢剂,煮沸30分钟。然后可以用自来水冲洗玻璃器皿,用去垢剂擦洗,并再次冲洗。

您可以在大型蒸汽箱或类似设备中对玻璃器皿进行高温高压灭菌或消毒。如果存在病毒或携带孢子的细菌,绝对必须进行高温高压灭菌。

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 处理和存储

为防止移液管、量筒或滴定管在冲洗或洗涤时破损,小心不要让尖端碰到水槽或水龙头。

干燥试管、培养管、烧瓶和其他实验室器皿,将它们挂在木钉上,或者放在篮子里,开口朝下,在空气中自然晾干。或者将它们放在篮子里,在烘干机中烘干。干燥温度不应超过140°C。在干燥篮里垫上干净的布,以保持容器口清洁。

将滴定管、移液管和量筒放在折叠的毛巾上使其干燥。保护好干净的玻璃器皿,防止沾染灰尘。最好的做法是用棉花、塞子塞住容器口,或者在容器口上贴一张厚纸,也可将玻璃器皿放在无尘柜里。

将玻璃器皿存放在专门设计的架子上。每个玻璃器皿应保持距离,以免破损。

请勿在容量瓶或滴定管中存放碱性液体。塞子或旋塞可能会粘住。

妥善保管和处理Pyrex®和PyrexPlus®实验室器皿,将大大延长其使用寿命,并提高工作场所的安全性。

清洁特定类型的实验室玻璃器皿
PyrexPlus® 实验室器皿
高温高压灭菌:
PyrexPlus®实验室器皿可以使用液体或干循环灭菌法成功灭菌,无需真空或低真空(<5英寸汞柱)。

建议用自动高温压灭菌器灭菌的周期

 

杀菌釜类型

高温高压灭菌循环 重力 预抽真空
液体
干燥
预抽真空

小心:对容器进行高温高压灭菌时,请务必松开容器的盖子或塞子等。

蒸汽灭菌时间在121°C(250°F)时不应超过15分钟。在110°C(230°F)时,干燥时间不应超过15分钟。应检查杀菌釜内腔的实际温度,以确保高温高压灭菌温度不超过推荐的灭菌和干燥温度。

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 高温高压灭菌,晦暗

如果涂层由于溶入的水气而显得晦暗,只需在室温下自然晾干一夜,或者短暂加热至110°C(230°F)即可。

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 清洁

一般而言,任何玻璃器皿在使用前均应进行清洁。任手动清洁或用自动洗涤机清洁时,可以使用任何非研磨性玻璃器皿去垢剂。如果使用洗涤机或玻璃器皿干燥器,应注意确保干燥温度不超过11​​0°C(230°F)。应尽量减少暴露于干热条件下。

避免使用可能会擦伤玻璃或损坏涂层的刷子和清洁块。如果使用铬酸去垢液,应尽可能避免溶液接触到涂层。

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 标签和标记

如要临时在PyrexPlus®实验室器皿的涂层上做标记,请使用水性标记笔或标签。溶剂型标记笔、染料和颜料所做的标记都无法从涂层上去除。

说明:使用PyrexPlus®实验室器皿时,可能会闻到轻微的“塑料”味。这是由于塑料涂层中提高性能的添加剂造成的。有气味是正常的,不会影响硅硼玻璃内表面的惰性。

有关其他信息,请参阅 PyrexPlus® 验室玻璃器皿的使用与保养。

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 滴定管

取下旋塞或橡胶头,用去垢剂和水清洗滴定管。用自来水冲洗,直到除去所有污垢。然后用蒸馏水冲洗并干燥。单独清洗旋塞或橡胶头。在将玻璃旋塞放入滴定管之前,用旋塞润滑剂润滑接头。请只使用少量润滑剂。在不使时,应始终盖好滴定管。

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 培养管

先前使用过的培养管在清洁之前必须先进行灭菌。对培养管进行灭菌的最佳做法是在121℃(15psi压力)下高温高压灭菌30分钟。对于冷却后会固化的培养基,应趁培养管热着时将培养基倒出。清空培养管后,用去垢剂和水刷洗,然后用自来水彻底冲洗,再用蒸馏水冲洗,最后放入篮子晾干。

如果要给培养管充装需要高温高压灭菌的培养基,则在充装培养基之前请勿塞上塞子。这样培养基和培养管可以一起进行高温高压灭菌。

如果培养管要装无菌培养基,则在装入培养基之前,要先将培养管塞上塞子,在杀菌釜或干燥空气灭菌器中对其进行灭菌。

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 器皿和培养瓶

根据 培养管 中的说明进行灭菌和清洁。用厚纸包好或放在培养皿保存桶中。在杀菌釜或干燥空气灭菌器中灭菌。

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 移液管

使用后,立即将移液管吸头朝下放入量筒或高水桶中。请勿把它们扔进桶里,这有可能会损坏吸头,而使移液管无法进行精确测量。桶底部的棉垫或玻璃棉垫有助于防止吸头破裂。确保水位高到足以浸没移液管的大部分或全部。然后可以将移液管沥干,并放入装有去垢剂的量筒或桶中;如果特别脏的话,在桶里加铬酸去垢液。浸泡数小时或过夜后,沥干移液管,并用自来水里外冲洗,直至所有污垢都洗净。将移液管浸泡在蒸馏水中至少一小时。从蒸馏水中取出,冲洗干净,用布擦干外面,把里面的水甩出,然后晾干。

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 血细胞计数稀释移液管

使用后,用冷自来水、蒸馏水、酒精或丙酮彻底冲洗,然后用乙醚冲洗。

用抽吸的方法干燥。请勿向移液管内部吹气,否则会导致水分凝结在移液管内壁。为了去除凝结的血液或污垢颗粒,应使用去垢液。有时只需一种溶液就够了,有时则需要较强烈的溶液。最好是在移液管里装上去垢液放上一夜。可以使用次氯酸钠(洗衣漂白剂)或去垢剂, 也可以用过氧化氢。在污垢顽固的情况下,可使用浓硝酸。去除有些颗粒可能需要用马鬃刷或细钢丝刷刷松。注意不要划伤移液管内壁。

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 移液管自动洗涤机

在每天使用大量移液管的情况下,可使用移液管自助动洗涤机。

它们有一些是由金属制成,可以通过永久性安装件直接连接到冷热水供应源。

其他的诸如聚乙烯制成的洗涤机,可以用橡胶软管连接到供水上。聚乙烯桶可用来装铬酸去垢液浸泡和冲洗移液管。另外还有电加热金属移液管干燥器。

干燥后,将移液管放入无尘抽屉中。将血清移液管和细菌移液管用纸包好,或放入移液管桶中,并在干燥空气灭菌器中消毒。用于转移传染性物质的移液管,应在灭菌前用棉塞塞住移液管顶端。塞子将防止受测材料被意外地吸入移液装置中。

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 血清管

血清学管应进行化学清洁,但不必是无菌的。 然而,如果要在室温下保存血液样本一段时间,应将其收集在无菌容器中。因此最好对所有血清管消毒。清洁和消毒含有血液的血清管时,首先把管中血液凝块丢弃在垃圾桶中,然后将管子放在一个大篮子里。将该篮子与其他篮子一起放在一个大桶或锅中。盖上盖子,加入适量的皂液或去垢剂,煮沸30分钟。冲洗管子,用刷子清洁,小心冲洗和干燥。

洗涤血清玻璃器皿时必须彻底清除所有酸、碱和去垢剂。少量的酸、碱和去垢剂会干扰血清学反应。血清管和玻璃器皿应与所有其他玻璃器皿分开存放,而且仅用于血清学操作程序。

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 载玻片和盖玻片

特别重要的是,用于制备血膜或细菌载玻片的显微镜载玻片和盖玻片应完全清洁且无划痕。应清洗载玻片,置于冰醋酸中10分钟,然后用蒸馏水冲洗,并用干净的纸巾或布擦干。将载玻片清洗干净后,将其放入宽大的酒精罐中。需要时从罐子中取出并擦干。如果载玻片是干燥储存的,请在使用前用酒精清洗。

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1. 铬酸去垢液 — 使用商用级或工业级重铬酸钠或重铬酸钾粉末。如果化合物是晶体形式,则在研钵中研磨成细粉。在一升烧杯中加入20克粉末,加入少许水制成稀糊状物。缓慢加入约300mL商用浓硫酸,充分搅拌。转移到带玻璃塞的瓶子里盖好盖子。

可以以相同的比例配制更大的量。使用澄清的上清液。铬酸溶液可以反复使用,直到它开始变成绿色。按照适用的规定弃置。在弃置之前,用大量水稀释,或用氢氧化钠小心地中和稀释的溶液。铬酸溶液呈强酸性,会严重烧伤皮肤。处理时务必小心。

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