No, libraries made with SeqPlex™-I WTA Kit fit directly into NGS workflows. Sequencing instrument operators should be notified of running libraries created with SeqPlex™-I WTA Kit and to expect a slight signal from any remaining primers in the IVC plots.
Größe auswählen
€ 1.180,00
€ 4.010,00
€ 14.100,00
€ 1.180,00
Über diesen Artikel
Fortfahren mit
technique(s)
whole genome amplification: suitable, whole transcriptome amplification: suitable
dilution
(WTA)
input
purified RNA
compatibility
Illumina (Next Generationa Sequencing)
shipped in
wet ice
storage temp.
−20°C
Verwandte Kategorien
1 of 4
Dieser Artikel | SEQXI | SEQR | SEQXE |
|---|---|---|---|
| technique(s) whole genome amplification: suitable, whole transcriptome amplification: suitable | technique(s) DNA amplification: suitable, PCR: suitable, whole genome amplification: suitable | technique(s) whole genome amplification: suitable | technique(s) whole genome amplification: suitable |
| compatibility Illumina (Next Generationa Sequencing) | compatibility Illumina Next Generation Sequencing | compatibility - | compatibility - |
| shipped in wet ice | shipped in wet ice | shipped in wet ice | shipped in wet ice |
| storage temp. −20°C | storage temp. −20°C | storage temp. −20°C | storage temp. −20°C |
General description
Prä-Amplifikation/Bibliothek-Synthese: Im Schritt der Prä-Amplifikation/Bibliothek-Synthese unter Verwendung der (Reagenzien zur Bibliothekserstellung) wird die Matrizen-RNA mithilfe von Primern, die aus einem semi-degenerierten 3′-Ende und universellen 5′-Enden bestehen, revers transkribiert. Im weiteren Verlauf der Polymerisation dienen verdrängte und durch RNase H erzeugte Einzelstränge als neue Matrizen für weitere Primerhybridisierung und weitere Elongation, durch die zufällige, überlappende cDNAs entstehen, die von einem universellen Primer (5′) und einer Primer-Komplement-Sequenz (3′) flankiert werden.
Amplifikation 1: Bei der Synthese der Amplifikationsbibliothek (mithilfe der Reagenzien für die Amplifikation 1) werden Produkte aus der Prä-Amplifikation/Bibliothek-Synthese mittels Einzelprimer-PCR über die Sequenz am universellen Ende amplifiziert. Diese Amplifikationsprodukte haben üblicherweise 200 bis über 500 Basenpaare. Hinweis: Amplikons aus degradierter RNA (z. B. Formalin-fixiert Paraffin-eingebettet, FFPE), sind normalerweise kürzer und abhängig von der Länge der Start-RNA.
Amplifikation 2: Bei der Synthese der Sequenzierungsbibliothek (mithilfe der Reagenzien für die Amplifikation 2) werden Einzelprimer-Amplikons aus der Amplifikation 1 in duale Illumina®-Primer-PCR-Produkte umgewandelt, die bereit für die Aufreinigung, Quantifizierung und Illumina®-NGS sind.
Application
Features and Benefits
- Amplifiziert fragmentierte/extrem kleine Mengen der Gesamt-RNA: Fragmentierte oder intakte RNA jeglicher Herkunft einschließlich FFPE und RIP werden problemlos mittels Random-Priming-Technologie amplifiziert.
- Semi-degeneriertes Library-Primer-Design für eine vollständigere Transkriptomabdeckung und effizientes Priming
- Weniger Arbeitsschritte: cDNA-Fragmentierung vor der Sequenzierung entfällt
- Hohe Effizienz: ds-cDNA-Amplifikation innerhalb von maximal 8 Stunden
- Kosteneffizient: Kein zusätzlicher Schritt zur Erstellung der NGS-Bibliothek erforderlich
- Kompatibel mit Illumina® Next Generation Sequencing
Other Notes
a) Die Reagenzien in diesem Kit wurden getestet, um sicherzustellen, dass keine RNasen vorhanden sind.
b) Der Anwender muss jedoch die Integrität der Versuchsergebnisse durch das Tragen grundlegender Schutzausrüstungen sicherstellen, zu denen Handschuhe und Laborkittel gehören.
c) Alle Transfers von Reagenzien im Rahmen dieses Prozesses sollten unter einer Laminar-Flow-Haube oder in einem dafür vorgesehenen Reinraum durchgeführt werden.
d) Gefrorene RNA-Proben sollten auf Eis aufgetaut werden.
2) Eine 20-μL-Reaktion im Amplifikationsschritt 2 ergibt >100 ng amplifizierter doppelsträngiger cDNA, wenn man mit 100 pg bis 5 ng qualitativ hochwertiger RNA startet. Höhere Ausgangsmengen und eine höhere Qualität des RNA-Templates führen in der Regel zu einer verbesserten Ausbeute. Bei beschädigter RNA, z. B. aus FFPE, werden 1–50 ng RNA als Ausgangsmenge empfohlen.
3) Die in diesem Kit enthaltenen Dual-Index-Adapterprimer (AP100) können nur für eine Probe verwendet werden. Wenn für die Sequenzierung ein Pooling von Proben erforderlich ist, muss der Anwender zusätzliche Index-Primer-Sets verwenden. Siehe Beispiel zu Index-Primer-Sequenzen auf Seite 2 des technischen Merkblatts.
Legal Information
Disclaimer
signalword
Danger
hcodes
pcodes
Hazard Classifications
Resp. Sens. 1
Lagerklasse
10 - Combustible liquids
wgk
WGK 3
Hier finden Sie alle aktuellen Versionen:
Besitzen Sie dieses Produkt bereits?
In der Dokumentenbibliothek finden Sie die Dokumentation zu den Produkten, die Sie kürzlich erworben haben.
Artikel
SeqPlex™-I WTA kit amplifies RNA for NGS, enabling genomic studies from limited samples.
Verwandter Inhalt
Die Herstellung monoklonaler Antikörper wurde durch große technologische Fortschritte noch schneller und effizienter. Es gibt drei etablierte Plattformen für die Antikörperforschung. Wir bieten Reagenzien zur Herstellung von Bibliotheken monoklonaler Antikörper für alle Verfahren an.
Major technological advances have made the production of monoclonal antibodies quicker and more efficient. There are three established platforms for antibody discovery. We offer reagents for production of monoclonal antibody libraries using each of these techniques.
-
Will SeqPlex™-I libraries require special NGS sequencing protocols?
1 answer-
Helpful?
-
-
Are there advantages to SeqPlex™-I over GenomePlex?
1 answer-
SeqPlex™-I Pre-Amplification primers have been designed to target more frequently than existing GenomePlex WTA primers and therefore may provide the advantage of superior genome coverage in some regions.
Helpful?
-
-
Is SeqPlex™-I WTA Kit compatible with microarrays and qPCR?
1 answer-
Yes, libraries made using SeqPlex™-I WTA Kit can be used in these applications like genomic DNA or existing GenomePlex products.
Helpful?
-
-
Will reducing cycles during amplification improve representation?
1 answer-
No, you need to reach “plateau” for optimum representation. Proceeding past 1-2 cycles will not negate the reactions, but best representation is achieved around “plateau”. Insufficient cycling leads to a significant reduction in representation/coverage.
Helpful?
-
Active Filters
Unser Team von Wissenschaftlern verfügt über Erfahrung in allen Forschungsbereichen einschließlich Life Science, Materialwissenschaften, chemischer Synthese, Chromatographie, Analytik und vielen mehr..
Setzen Sie sich mit dem technischen Dienst in Verbindung



