TRITC-konjugiertes F-Actin in ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit-behandelten Zellen.
Mit Vinculin-Antikörper und FITC-konjugiertem Sekundärantikörper visualisierte Fokalpunktkontakte in nicht mit dem ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit behandelten Zellen.
F-Actin, Herdkontakte und der Zellkern werden in nicht mit dem ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit behandelten Zellen sichtbar gemacht und überlagert.
TRITC-konjugiertes F-Actin in nicht-ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit-behandelten Zellen.
Mit Vinculin-Antikörper und FITC-konjugiertem Sekundärantikörper visualisierte Fokalpunktkontakte in mit ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit behandelten Zellen.
F-Actin, Herdkontakte und der Zellkern werden in mit dem ProteoExtract Cytoskeleton Enrichment and Staining Kit behandelten Zellen sichtbar gemacht und überlagert.
Obwohl die Untersuchung von Zellen, die aus in vivo-Gewebe stammen, am aussagekräftigsten für die Zellbiologie und -funktion ist, kann die biologische Komplexität die Ergebnisse beeinträchtigen, wenn die Zielzellpopulationen nicht isoliert werden. Für die Untersuchung von Zellphänotypen haben sich verschiedene Methoden zur Isolierung von Zellpopulationen auf der Grundlage bestimmter Merkmale entwickelt. Die Isolierung von Zellpopulationen dient nicht nur der biologischen Forschung, sondern erleichtert auch klinische Diagnosetests. Die effektivsten Isolierungsmethoden zeichnen sich durch erhöhte Ausbeute, Reinheit und Lebensfähigkeit aus. Die Anreicherung oder Reinigung von Zielpopulationen kann durch Positivselektion─oft unter Verwendung von Antikörpern, die zellspezifische Marker binden─oder durch Negativselektion erreicht werden, bei der biophysikalische Eigenschaften genutzt werden können, um unerwünschte Zellen zu entfernen, damit die Zielpopulation angereichert werden kann.
Die Fraktionierung von Zellen in ihre subzellulären Komponenten ist seit langem von grundlegender Bedeutung für zellbiologische Studien. Subzelluläre Fraktionierungstechniken sind weit verbreitet, um die Struktur und Funktion von Organellen und subzellulären Kompartimenten zu untersuchen und die Lage, Verarbeitung und den Transport von Biomolekülen zu verstehen. Das Ziel der meisten Fraktionierungstechniken ist es, Organellen und zelluläre Makromoleküle in einem funktionellen Zustand zu erhalten, in dem sie ihre intrinsischen biochemischen Eigenschaften behalten. Dies wird oft durch eine Zelllyse mit sanften mechanischen Mitteln oder mit milden Detergenzien erreicht, häufig gefolgt von einer Fraktionierung der zellulären Komponenten durch differentielle Zentrifugation.
Sichtbare Lipidtropfen bestätigen die Isolierung von Präadipozyten 7 Tage nach der Differenzierung mit dem 3T3-L1 Differenzierungskit.
Organellen und subzelluläre Komplexe Isolierungskits
Die Isolierung subzellulärer Komponenten fördert das Verständnis der Organellenfunktion und kann zu neuen Biotechnologien führen. So können beispielsweise aus Säugetierzellen isolierte Zellkerne anschließend für die Synthese endogener RNA-Primärtranskripte verwendet werden. Das hoch ergiebige Nuclei EZ Prep Kit (NUC101, NUC201) wurde für die schnelle Isolierung von Zellkernen aus den meisten Säugetierzellen entwickelt.
Für den Nachweis der mitochondrialen Integrität und des Membranpotentials wurde unser Mitochondrien-Färbekit (CS0390, CS0760) verwendet den Farbstoff JC-1 (420200, T4069), der sich in der mitochondrialen Matrix anreichert und rot fluoreszierende Aggregate bildet. Ereignisse wie Apoptose, die das mitochondriale Membranpotenzial aufheben, verhindern die Anhäufung des JC-1-Farbstoffs in den Mitochondrien, so dass mit einem Fluoreszenzmikroskop zwischen lebensfähigen und geschädigten Mitochondrien unterschieden werden kann.
Auch nicht-organelluläre subzelluläre Komplexe wie Proteasomen können zur Verwendung in proteolytischen Tests isoliert werden. Bei unserer Methode werden Affinitätsmatrix-Perlen verwendet, die ein GST-Fusionsprotein mit einer ubiquitinähnlichen Domäne enthalten, die an GST-Agarose gebunden ist.
Zelllinien von Menschen und anderen Säugetierarten sind für die Modellierung von Krankheiten und biologischen Systemen unverzichtbar und stellen wichtige Werkzeuge für die Herstellung von Proteinen, Antikörpern, Viren und Impfstoffen dar. Wir bieten authentifizierte, kontaminationsfreie Zelllinien an, viele in Zusammenarbeit mit der ECACC.
Zur Auswahl steht ein Sortiment an optimierten Zellkultur-Medienformulierungen, darunter DMEM, RPMI-1640 und serumfreie Alternativen für unterschiedliche Bedürfnisse der Zellen.
Verbessern Sie Ihre Hochdurchsatz-Screening-Möglichkeiten mit MultiScreen®-Filtrationsplatten, die sich ideal für ELISpot, Ligandenbindung und mehr eignen.
Verbessern Sie die Zellkultur mit Millicell®-Einsätzen, Platten, Kammern und Kolben. Erzielen Sie biologisch relevantes Wachstum, wählen Sie hängende oder stehende Einsätze.
Ein Überblick über verschiedene Stammzelltypen, Grundlagen der Stammzellkultur und Anwendungen von Stammzellen in der Grundlagenforschung und der klinischen Forschung, wie z. B. in der Geweberegeneration, bei genetisch bedingten Erkrankungen und Krebs.
Werkzeuge für die Lebendzellbildgebung ermöglichen Analysen des Zelltransports, der Genexpression, der Migration, der 3D-Kultur und der Zytoskelettdynamik.
Ein Überblick über die Grundsätze und Anwendungen des Western Blotting zum Nachweis von Proteinen. Enthält Links zu detaillierten Protokollen, Videos und anderen Ressourcen für die Proteinextraktion, die Gelelektrophorese, den Transfer auf PVDF- oder Nitrozellulose-Membranen sowie chemilumineszente, kolorimetrische und Fluoreszenznachweisverfahren.
Anwendungen, Grundlagen und Methoden für die In-vitro-Kultivierung von Säugerzellen, einschließlich Links zu Artikeln, Protokollen und Videos zur korrekten aseptischen Arbeitsweise, Passagierung und Subkultivierung, sowie Erwägungen zu Kulturmedien.
Die Immunhistochemie (IHC) ist eine gebräuchliche Immunfärbemethode, die von Forschern eingesetzt wird, um spezifische Zielantigene in gesundem und krankem Gewebe zu identifizieren.
Proteinaufreinigungsverfahren, Reagenzien und Protokolle zur Aufreinigung rekombinanter Proteine unter Anwendung von Methoden wie Ionenaustausch, Größenausschluss und Proteinaffinitätschromatographie.
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